《一起又看流星雨第02集正片全集高清免费在线观看完整版冲55影院》剧情介绍:2.苹果羊肚菌瘦肉汤是人傀连邑保持恭敬目光落在前方同一时间那定格的金甲傀儡同时收势僵硬地行道揖在几人惊恐眼神中似远似近的声音说道诸位城主有请一起又看流星雨第02集正片全集高清免费在线观看完整版冲55影院铁喙飞鹤丹火鹤凤尾鹤云烟飘渺鹤星辰极光鹤……数万种飞鹤或是盘旋或是栖息在松树上或是盘踞在山石上可谓气象万千巍然壮观你还在小瞧质谱吗2022-03-10 10:58·伯远生物相信看过伯小远往期文章的童鞋应该会发现文章里面有不少地方都出现了质谱的身影但是在过去的日子里小远似乎还从未正儿八经地为大家介绍过质谱但奈何质谱的光芒实在太过耀眼所以这一期小远打算将质谱正式介绍给大家质谱定义质谱技术是建立在原子、分子电离以及离子光学理论基础之上的应用技术通过质谱分析可以获得无机、有机和生物分子的分子量和分子结构能对多种复杂混合物的各种成分进行定量或者定性分析质谱技术其实就是高中物理课本上经典的带电粒子在磁场中的运动问题的应用简单来说就是把复杂的混合物放在质谱体系中将其分解为原子、分子然后将电离后的原子、分子注入到电磁场中由于不同的带电粒子的质量和电荷比例不同偏转时间也不同质谱仪可以将这些时间、位置信息转换为光学数据以质谱图的形式展现出来复杂混合物的各种组分就得以被直观地观察到质谱图的横坐标是质荷比(m/z)纵坐标是离子强度概念听起来可能比较干涩难懂不过没关系我们今天主要讲它的应用看看它都可以干些啥原理后面再慢慢理解也许就没那么难了蛋白质鉴定在蛋白质组学中蛋白质的鉴定几乎完全是通过质谱来实现的质谱可以鉴定任何已知基因组序列的蛋白质另外质谱分析方法最常见的是分析多肽而不是全长蛋白并且很多时候会看到质谱与其它技术联用来对蛋白进行鉴定这么说可能有点抽象但是有一个实验大家应该都有所耳闻——IP-MS(免疫沉淀-质谱联用技术)在前面的多期文章中都有出现为了加深大家对该技术的理解伯小远找了相关的实验案例再次为大家进行讲解在Leucine-rich repeat extensin proteins regulate plant salt tolerance in Arabidopsis一文中作者为了研究LRX蛋白在生长调控和耐盐性中的作用机制使用35S::LRX3-YFP-HA、35S::LRX4-YFP-HA和35S::LRX5-YFP-HA转基因植物进行了免疫沉淀-质谱(IP-MS)分析以确定LRXs的潜在相互作用蛋白同时以表达35S::GFP的转基因植株作为对照结果发现在LRX转基因植物的IP-MS样本中鉴定出了4个系统发育相关的RALF多肽:RALF22、RALF23、RALF24和RALF31但在对照样本中没有发现(图1)后面的实验我想大部分小伙伴都已经知道是什么了没错就是利用点对点验证蛋白互作的方法对IP-MS鉴定得到的LRX的互作蛋白进行验证这个套路相信大家已经熟悉的不能再熟悉了所以不清楚的小伙伴一定要记下来哦图1 在IP-MS检测中鉴定出的LRX和RALF蛋白的多肽(Zhao et al., 2018)从35S::LRX3-YFP-HA、35S::LRX4-YFP-HA和35S::LRX5-YFP-HA转基因植株中提取蛋白以过表达空载GFP的转基因植株为对照分离的蛋白与抗GFP抗体孵育过夜用质谱法对免疫沉淀样品进行分析每个蛋白质所鉴定的多肽的数量被显示出来破折号-表示肽没有被识别小远叨叨:如果我们想要研究一个未知蛋白的互作蛋白是什么除了想到酵母双杂筛库的实验之外IP-MS也是我们应该想到的方法IP-MS不仅能得到与酵母双杂筛库类似的结果并且还具有以下优点:1、IP-MS筛选的是天然状态下的蛋白(没有破坏蛋白的结构)互作在一定程度上更能反应生物体内的真实情况;2、不用像酵母双杂筛库那样担心诱饵蛋白会存在自激活作用因此以后在研究一个未知蛋白的互作蛋白时可以首先考虑IP-MS哦质谱定量分析除了表型表达和蛋白质特性的初步鉴定外蛋白质组学分析中的一个关键参数是对感兴趣的蛋白质进行定量的能力大约二十年前蛋白质组学在很大程度上还是一门定性学科典型的蛋白质组学实验结果是在一个给定的组织或蛋白质复合物中鉴定出蛋白质的列表而没有任何对于丰度、分布或化学计量学的进一步信息相比之下那个时候定量策略已被广泛应用于微阵列或定量PCR的基因表达分析特别是在植物中大规模基因组学的测定为植物发育和生理的许多方面提供了新的见解然而酶的反应和信号通路最终取决于蛋白质的活性蛋白质的数量受蛋白质合成和降解的调控可能与转录调控没有太大的关系(Piques et al., 2022)此外翻译后修饰、异构体和剪接变异体不能仅通过分析转录本的丰度来获取因此为了对一些生物学现象进行解释蛋白定量分析是必要的质谱的出现为蛋白质组复杂性分析提供了技术框架定量蛋白质组学可以分为相对定量和绝对定量相对定量旨在研究不同条件下蛋白质组表达的差异而绝对定量是指获得蛋白质的特异性表达水平绝对定量需要使用标准化的参考样品小远在下表中列出了一些常见的质谱定量方法大家有兴趣可以深入了解这里不做具体介绍哦表1 蛋白质定量组学不同工作流程的技术参数概述注:1只有通过与加标记的已知标准品进行相对比较才能实现绝对定量2绝对定量只能通过经验特征和使用样品中蛋白质的分子量和总蛋白质量的反计算来进行MS2:质谱法对肽离子破碎后产生的所有离子进行检测片段离子扫描也称为MS2扫描或MS/MS扫描质谱法确定蛋白翻译后修饰翻译后修饰(PTMs)是通过蛋白水解裂解或将修饰基团共价加到一个或多个氨基酸上而改变蛋白质性质的加工过程仅仅根据丰度的变化来描述蛋白质的功能对了解蛋白质组是非常有限的因为许多蛋白质的活性是由PTMs调节的而PTMs可能不能准确地反映蛋白质丰度的变化这就是为什么许多用在蛋白质组范围内表征和定量蛋白质和多肽的质谱技术已经被应用于表征翻译后修饰的蛋白质的原因PTMs有多种类型包括磷酸化、泛素化、乙酰化、糖基化等质谱法被认为是蛋白质修饰分析的一个关键技术因为它可以提供有关蛋白质修饰的通用信息而无需先知道修饰位点的位置自上而下自中而上和自下而上的方法是基于MS的PTM分析的三种主要策略针对质谱蛋白定量与质谱确定翻译蛋白翻译后修饰小远先用一个例子给大家进行简单说明后期再对这部分内容进行详细讲解因为该部分展开来讲也是一个大工程啊栗子来了:模式植物拟南芥不仅改变了我们对植物生物学的认识还影响了生命科学的许多其他领域来自拟南芥的研究结果也为作物的重要农艺性状研究提供了思路拟南芥的基因组在20年前被测序自那以后人们在基因组和表观基因组水平上分析了数百种自然变异相比之下拟南芥蛋白质组作为大多数生命过程的主要执行者其特征远没有那么全面为了解决这一差距在Mass-spectrometry-based draft of the Arabidopsis proteome一文中作者使用了最先进的质谱和RNA测序(RNA-seq)分析获得了我们所知的第一个拟南芥综合蛋白质组、磷蛋白质组和转录组图谱这个丰富的分子资源可以用来探索单个蛋白质的功能或跨越几个组学水平的整个途径图2 组织图和多组数据集(Mergner et al., 2020)a. 分析的组织样本示意图根据形态学分组着色(缩写定义在b中):花(浅灰色);种子(深棕色);花粉(黄色);茎(深绿色);叶(浅绿色);根(深灰色);水果(浅棕色);愈伤组织(红色);细胞培养(蓝色)b. 所有组织的蛋白质、P-位点和转录水平的识别数(n=1个测量值)虚线表示在所有组织中检测到的核心蛋白、P-位点或转录本的数量组织增强的蛋白质或转录本用较深的颜色标记具有高可信度氨基酸定位的P-位点(I类位点;大于0.75的定位概率)用粉色表示;模糊的位点定位用紫色表示在一个组织中特异性检测到的P-位点的数量用圆圈表示c. 与Araport11相比转录组、蛋白质组和磷酸化蛋白质组数据集中鉴定出的基因位点总数和重叠部分(左)以及鉴定出的P-位点总数和I类位点的比例(右)通过这个例子可以看到质谱不仅可以得到蛋白水平的定量数据还可以鉴定磷酸化位点得到磷酸化蛋白质组数据集比起RNA-seq质谱是不是要厉害的多除了鉴定磷酸化其它的蛋白翻译后修饰也可以通过质谱进行鉴定要想了解更多请关注伯小远后期的文章质谱与代谢代谢组学是一个相对较新的研究领域然而自从1998年Oliver和他的合作者引入代谢组这个术语后有关这一主题的出版物呈指数级增长与动物相比植物含有非常丰富的代谢物;植物中代谢物的总数估计在20万或更多(K. Oksman-Caldentey and K. Saito, 2005)正因如此植物代谢组学在许多领域得到了广泛的应用如用于分类学或生物化学目的基因或生态型指纹分析突变体和转基因植物与其野生型的比较外部刺激对代谢产物谱的影响植物与草食动物的相互作用、发育过程、药材质量控制及药用植物活性测定(Wolfender et al., 2013)等由于植物代谢组学的应用是非常多样化的因此用于分析植物代谢组学的技术也是多样化的联用方法如质谱与气相色谱或液相色谱(GC-MS和LC-MS)、直接注射质谱(DIMS)、核磁共振(NMR)、毛细管电泳质谱(CE-MS)等下面伯小远要给大家介绍的是一种比较新的工作流程该流程由2019年发表在The Plant Journal上的一篇题为Comprehensive mass spectrometry-guided phenotyping of plant specialized metabolites reveals metabolic diversity in the cosmopolitan plant family Rhamnaceae的文章中提出文章介绍了该流程是一种可扩展的半自动化方法通过整合几种计算质谱/质谱数据分析方法来将植物代谢产物的多样性和分布进行数字化展示图3 利用串联质谱(MS/MS)对植物专用代谢物进行表型分析的数据分析工作流程(Kang et al., 2019)利用串联质谱进行光谱相似性分析将相似的光谱聚类成分子族形成一个分子网络网络注释传播(NAP)为单个光谱提供了硅注释候选使用ClassyFire对这些候选分子进行化学分类然后根据每个分子家族中最主要的化学类别对分子家族进行假定注释同时利用MS2LDA分析了共发生片段和中性损失(Mass2Motifs)的分布为其提供了样品间亚结构多样性和分布的信息质谱成像质谱成像(MSI)是一种基于质谱的分子离子成像技术质谱可以从表面微米级大小的区域获得将化合物在表面(微电子学组织切片)上的横向分布转换为图像进而与光学图像相关联一些常见的电离技术包括DESI成像MALDI成像和二次离子质谱成像(SIMS成像)MSI能够对复杂表面的广泛分子进行无标记检测和定位它已成为制药和医学研究中一个有吸引力的分子组织学工具自2005年以来MSI逐渐应用于植物研究(Imai et al., 2005;Mullen et al., 2005)蛋白质和代谢产物的空间组织信息将大大提高我们对植物代谢和特定植物组织生化功能的认识(Lee et al., 2012;Matros and Mock, 2013)MSI实验的核心是质谱仪它由离子源、质谱分析仪和探测器三大部分组成在离子源中分析物被解吸和电离;在分析仪中它们根据质量电荷比(m/z)被分离;最后分离的离子在探测器中被检测到作为最终输出通过在m/z刻度上显示被检测离子的强度来产生质谱微探针MSI的基本原理很简单:仪器通过对组织样本的特定区域进行光栅化收集一系列的质谱随后通过绘制分析物在质谱中的单个m/z峰与x-y坐标的强度生成分析物在样品表面的分布图(Goodwin et al., 2008;Svatos, 2010)MALDI成像实验的典型工作流程如图4所示图4 典型的MALDI成像实验流程样品处理是MSI中最关键的步骤因为只有适当的样品制备才能保持分子的来源、分布和丰度确保高质量的信号和足够的空间分辨率(Grassl et al., 2011;Kaspar et al., 2011;Peukert et al., 2012;Spengler, 2014)植物组织的MSI样品制备方法比哺乳动物组织的更具挑战性(Boughton et al., 2015;Heyman and Dubery, 2016)高等植物体的角质层代表了内部代谢产物是直接质谱成像的第一个障碍因为大多数软化技术(如MALDI和DESI)难以穿透它们(Thunig et al., 2011)植物细胞壁是细胞内分子质谱成像的第二屏障例如当基质溶液喷到植物体表面时细胞壁会阻止溶液在细胞壁上扩散导致MALDI成像中分析物提取效率降低(Takahashi et al., 2015)植物组织中的高水分含量在冷冻切片过程中存在另一个挑战植物组织在冷冻时更为脆弱此外对于富含水分的植物样本也更难获得完整的薄切片在脱水过程中经常观察到样品收缩或部分剥落这种现象通常会导致表面不平整进而影响MSI分析需要注意的是样品的收缩也可能导致MS图像和光学图像之间的不匹配(Cha et al., 2008)使生物解释变得困难下面是对于质谱成像在植物研究中的应用举例图5 角质层下代谢产物的质谱成像(i)拟南芥叶片的MALDI成像用镊子夹住叶的左边中间不处理右边浸氯仿(b)山奈酚(a)和山奈酚鼠李糖苷(d)在钳夹和氯仿浸泡区容易检测到而在氯仿浸泡区C26(c)和C30(f)的脂肪酸被洗掉未鉴定的分析物m/z=210(d)在氯仿浸渍区显示出高丰度(ii)大麦叶表皮m/z=276(b)、298(c)和300(d)的羟基丁腈苷的DESI图像叶背面表皮带被剥落(a)(iii)印迹成像与直接DESI成像的比较(A)聚四氟乙烯上叶印的间接DESI成像(B)直接DESI成像以氯仿甲醇和水(1:1:0.4v/v/v)作为喷雾溶剂(a)百脉根叶片的光学图像(a1)在聚四氟乙烯上的叶印记的光学图像(b-e)分别为m/z 104、286、298和300的DESI图像这些数据分别整合自(Cha et al., 2008)、(Li et al., 2011)、(Li et al., 2013)和(Bjarnholt et al., 2014)基于植物的MSI先前集中在方法论方面(Matros and Mock, 2013)而现在的技术已经成熟因此它也被用于解决生物学重要的问题(Lee et al., 2012)例如在植物环境交互(Shroff et al., 2008,2015;Klein et al., 2015;Ryffel et al., 2015;Soares et al., 2015;Tata et al., 2015)新的化合物鉴定(Jaeger et al., 2013;Debois et al., 2014)和功能基因组学(Korte et al., 2012;Li et al., 2013)都有一定的应用大家有兴趣可以自己去了解哦小 结通过以上几个方面的介绍小远相信你对质谱应该有了一个大致地了解对于完全不了解质谱的人看完今天的文章可能还会存在似懂非懂的情况不懂也没关系只要你知道质谱有哪些方面的应用并且在以后做相关的实验时能够想到质谱小远就算没白写这篇文章啦不管怎样质谱都只是一个实验工具是服务于科研的作为一个科研工作者你要做的就是如何利用好它让它发挥更大的价值哦References:Bantscheff M, Boesche M, Eberhard D, et al. Robust and sensitive iTRAQ quantification on an LTQ Orbitrap mass spectrometer[J]. Molecular & Cellular Proteomics, 2008, 7(9): 1702-1713.Boughton B A, Thinagaran D, Sarabia D, et al. Mass spectrometry imaging for plant biology: a review[J]. Phytochemistry Reviews, 2016, 15(3): 445-488.Cha S, Zhang H, Ilarslan H I, et al. Direct profiling and imaging of plant metabolites in intact tissues by using colloidal graphite‐assisted laser desorption ionization mass spectrometry[J]. The Plant Journal, 2008, 55(2): 348-360.Debois D, Jourdan E, Smargiasso N, et al. Spatiotemporal monitoring of the antibiome secreted by Bacillus biofilms on plant roots using MALDI mass spectrometry imaging[J]. Analytical chemistry, 2014, 86(9): 4431-4438.Grassl J, Taylor N L, Millar A H. Matrix-assisted laser desorption/ionisation mass spectrometry imaging and its development for plant protein imaging[J]. Plant methods, 2011, 7(1): 1-11.Gygi S P, Rist B, Gerber S A, et al. Quantitative analysis of complex protein mixtures using isotope-coded affinity tags[J]. Nature biotechnology, 1999, 17(10): 994-999.Heyman H M, Dubery I A. The potential of mass spectrometry imaging in plant metabolomics: a review[J]. Phytochemistry reviews, 2016, 15(2): 297-316.Imai T, Tanabe K, Kato T, et al. Localization of ferruginol, a diterpene phenol, in Cryptomeria japonica heartwood by time-of-flight secondary ion mass spectrometry[J]. Planta, 2005, 221(4): 549-556.Jaeger R J R, Lamsho?ft M, Gottfried S, et al. HR-MALDI-MS imaging assisted screening of β-carboline alkaloids discovered from Mycena metata[J]. Journal of Natural Products, 2013, 76(2): 127-134.Kang K B, Ernst M, van der Hooft J J J, et al. Comprehensive mass spectrometry‐guided phenotyping of plant specialized metabolites reveals metabolic diversity in the cosmopolitan plant family Rhamnaceae[J]. The Plant Journal, 2019, 98(6): 1134-1144.Kaspar S, Peukert M, Svatos A, et al. MALDI‐imaging mass spectrometry–an emerging technique in plant biology[J]. Proteomics, 2011, 11(9): 1840-1850.Klein A T, Yagnik G B, Hohenstein J D, et al. Investigation of the chemical interface in the soybean–aphid and rice–bacteria interactions using MALDI-mass spectrometry imaging[J]. Analytical chemistry, 2015, 87(10): 5294-5301.Korte A R, Song Z, Nikolau B J, et al. Mass spectrometric imaging as a high-spatial resolution tool for functional genomics: Tissue-specific gene expression of TT7 inferred from heterogeneous distribution of metabolites in Arabidopsis flowers[J]. Analytical Methods, 2012, 4(2): 474-481.Lee Y J, Perdian D C, Song Z, et al. Use of mass spectrometry for imaging metabolites in plants[J]. The Plant Journal, 2012, 70(1): 81-95.Li B, Bjarnholt N, Hansen S H, et al. Characterization of barley leaf tissue using direct and indirect desorption electrospray ionization imaging mass spectrometry[J]. Journal of mass spectrometry, 2011, 46(12): 1241-1246.Li B, Knudsen C, Hansen N K, et al. Visualizing metabolite distribution and enzymatic conversion in plant tissues by desorption electrospray ionization mass spectrometry imaging[J]. The Plant Journal, 2013, 74(6): 1059-1071.Matros A, Mock H P. Mass spectrometry based imaging techniques for spatially resolved analysis of molecules[J]. Frontiers in Plant Science, 2013, 4: 89.Mergner J, Frejno M, List M, et al. Mass-spectrometry-based draft of the Arabidopsis proteome[J]. Nature, 2020, 579(7799): 409-414.Mullen A K, Clench M R, Crosland S, et al. Determination of agrochemical compounds in soya plants by imaging matrix‐assisted laser desorption/ionisation mass spectrometry[J]. Rapid Communications in Mass Spectrometry: An International Journal Devoted to the Rapid Dissemination of Up‐to‐the‐Minute Research in Mass Spectrometry, 2005, 19(18): 2507-2516.Oksman-Caldentey K M, Saito K. Integrating genomics and metabolomics for engineering plant metabolic pathways[J]. Current opinion in biotechnology, 2005, 16(2): 174-179.Ong S E, Kratchmarova I, Mann M. Properties of 13C-substituted arginine in stable isotope labeling by amino acids in cell culture (SILAC)[J]. Journal of proteome research, 2003, 2(2): 173-181.Peukert M, Matros A, Lattanzio G, et al. Spatially resolved analysis of small molecules by matrix‐assisted laser desorption/ionization mass spectrometric imaging (MALDI‐MSI)[J]. New Phytologist, 2012, 193(3): 806-815.Piques M, Schulze W X, H?hne M, et al. Ribosome and transcript copy numbers, polysome occupancy and enzyme dynamics in Arabidopsis[J]. Molecular systems biology, 2009, 5(1): 314.Ryffel F, Helfrich E J N, Kiefer P, et al. Metabolic footprint of epiphytic bacteria on Arabidopsis thaliana leaves[J]. The ISME journal, 2016, 10(3): 632-643.Shroff R, Schramm K, Jeschke V, et al. Quantification of plant surface metabolites by MALDI mass spectrometry imaging: glucosinolates on Arabidopsis thaliana leaves[J]. Plant J, 2015, 81: 961-972.Shroff R, Vergara F, Muck A, et al. Nonuniform distribution of glucosinolates in Arabidopsis thaliana leaves has important consequences for plant defense[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2008, 105(16): 6196-6201.Soares M S, da Silva D F, Forim M R, et al. Quantification and localization of hesperidin and rutin in Citrus sinensis grafted on C. limonia after Xylella fastidiosa infection by HPLC-UV and MALDI imaging mass spectrometry[J]. Phytochemistry, 2015, 115: 161-170.Spengler B. Mass spectrometry imaging of biomolecular information[J]. Analytical chemistry, 2015, 87(1): 64-82.Takahashi K, Kozuka T, Anegawa A, et al. Development and application of a high-resolution imaging mass spectrometer for the study of plant tissues[J]. Plant and Cell Physiology, 2015, 56(7): 1329-1338.Tata A, Perez C J, Ore M O, et al. Evaluation of imprint DESI-MS substrates for the analysis of fungal metabolites[J]. RSC advances, 2015, 5(92): 75458-75464.Thunig J, Hansen S H, Janfelt C. Analysis of secondary plant metabolites by indirect desorption electrospray ionization imaging mass spectrometry[J]. Analytical chemistry, 2011, 83(9): 3256-3259.Venable J D, Wohlschlegel J, McClatchy D B, et al. Relative quantification of stable isotope labeled peptides using a linear ion trap-Orbitrap hybrid mass spectrometer[J]. Analytical chemistry, 2007, 79(8): 3056-3064.Wolfender J L, Rudaz S, Hae Choi Y, et al. Plant metabolomics: from holistic data to relevant biomarkers[J]. Current Medicinal Chemistry, 2013, 20(8): 1056-1090.Zhao C, Zayed O, Yu Z, et al. Leucine-rich repeat extensin proteins regulate plant salt tolerance in Arabidopsis[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2018, 115(51): 13123-13128.NO.1好文推荐Historical articles转录因子研究套路(二)蛋白翻译后修饰——磷酸化(一)【支招】酵母筛库存在自激活怎么办【小远答疑】那些困扰你的Co-IP检测问题辨清敌我统一战线——确定基因上下游关系【小远答疑】Co-IP以及IP-MS相关实验问题解惑NO.2我们能提供的服务Technical service质谱IP-MS
《一起又看流星雨第02集正片全集高清免费在线观看完整版冲55影院》视频说明:莫愁慕容复喊了一声李莫愁立刻出现在他身旁人们纷纷悼念这位才华横溢的编剧他的作品也再一次成为大众热议的焦点谁知这句话反倒惹恼了姥爷他拍着桌子喊道:你个不孝女还敢教训起你老子来了要不是看在有了孙子的份上我早就把你们轰出去了
他想都没想几乎第一时间就调动防御蛊虫勉强撑起叁道防御不过有接近40%的年轻人表示虽然自己有设定存钱计划但是计划总是赶不上变化;能够按时完成存钱计划的年轻人不到25%
一切都变得箩颈苍驳彩起来这样的人生才是自己追求的啊成交量方面上半年全国100个城市新房成交面积同比下降约四成6月降幅收窄至两成二手房成交表现好于新房前5个月重点25城二手房成交量同比下降13%6月同比转增
2025-01-13 19:09:02